Июль, 2018
16

Влияние пчелиного подмора

Опубликовал: Petr_MS

Влияние пчелиного подмора на кроветворение и продуктивность перепелов

В пчелином подморе присутствуют компоненты меда, маточного молочка, пыльцы, пчелиного яда, прополиса, воска, 27 микроэлементов, витамины Е, К, D, Р, С, белки, аминокислоты, пищевые волокна, жир [1, 3, 4, 7]. В хитиновом покрове выделен хитозановый комплекс, в котором обнаружены гепарин, глюкозамины, меланин, пчелиный яд, уксусная кислота. Водорастворимый полимер меланин может поглощать различные радикалы и служит сильнейшим антиоксидантом, генным и фотопротектором, антимутагеном. В опытах на лабораторных и сельскохозяйственных животных получены положительные результаты воздействия пчелиного подмора на естественную резистентность и микробиоценоз кишечника [2, 5, 6].

Влияние пчелиного подмора на организм перепелов пока не изучалось. Нами была поставлена цель: исследовать этот вопрос и разработать научно обоснованную концепцию применения пчелиного подмора в перепеловодстве.

Опыты проводили в птичнике кафедры птицеводства и в лабораториях кафедры микробиологии и иммунологии РГАУ-МСХА им. К.А.Тимирязева. Использовали 140 перепелов мясной французской породы, выведенных в инкубаторе птичника. По принципу аналогов птиц разделили на четыре группы: 1-я — контрольная — перепелов в ней выпаивали питьевой водой; 2, 3, 4-я — опытные — в них перепелам в воду в течение 30 суток добавляли низкие, средние и высокие дозы соответственно экстракта пчелиного подмора (ЭПП). Его предварительно растворяли в воде из расчета 0,1 мл на 100 г. массы птиц. В начале опыта при средней живой массе 55-57 г. дозы ЭПП составили: 2-я группа — 0,05 мл/голова (1 капля на 1 птицу, 10 капель на 10 птиц на 100 мл воды; 3-я группа —0,1 мл/голова (2 капли на 1 птицу, 20 капель на 10 птиц на 100 мл воды); 4-я группа — 0,3 мл/голова (6 капель на 1 птицу, 60 капель на 10 птиц на 100 мл воды).

С 1-х по 14-е сутки перепелов выпаивали индивидуально из пипеток, в дальнейшем — групповым методом из поилок. Перерасчет доз ЭПП с учетом увеличения массы птиц проводили на 14-е сутки (29-суточные перепела) и не изменяли их до конца эксперимента (45-суточные перепела). Материал для исследования показателей лейкопоэза и эритропоэза перепелов отбирали на 7, 14, 30, 45, 60, 90 и 210-е сутки, миелограммы — на 14, 30, 45, 60 и 210-е сутки. Мазки крови фиксировали в 96-градусном этиловом спирте по Яхонтовой после обработки цитратом и оксалатом натрия. Мазки крови окрашивали Азур П-эозином и по Романовскому — Гимза, препараты (отпечатки из костного мозга) — по Нохту и Паппенгейму. Взвешивали перепелов на аналитических весах с точностью до 0,001 г. в 7, 14, 21, 30, 45, 60 и 90-суточном возрасте.

Содержание эритроцитов в крови перепелов при низкой дозе ЭПП (2-я группа) через 7 суток не отличалось от его уровня в 1-й группе. Средняя доза (3-я группа) способствовала умеренному повышению эритроцитов по сравнению с контролем в 1,07 раза. При высокой дозе ЭПП (4-я группа) количество эритроцитов, напротив, было в 1,08 раза ниже, чем в контроле.

На 14-е сутки максимальное содержание эритроцитов регистрировалось в крови перепелов 3-й группы. Выработка эритроцитов прогрессировала во всех группах, но во 2-й и 3-й группах показатели во все сроки были выше, чем в контроле, в 4-й группе, напротив, имели тенденцию к снижению. Значительное повышение эритроцитов отмечалось на 45-е сутки, кроме перепелов 4-й группы. Максимальное продуцирование эритроцитов регистрировали на 60-е сутки.

В последующем особых колебаний в содержании эритроцитов в контрольной и опытных группах не обнаруживалось. К 210-м суткам уровень эритроцитов в крови птиц 2-й и 3-й групп продолжал превышать показатель контроля в 1,15 и 1,22 раза соответственно, а в 4-й группе уступать ему в 1,33 раза (Р>0,95).

Количество гемоглобина на 7-е сутки заметно колебалось по группам. У перепелов 2-й и 3-й групп гемоглобин превысил контрольный уровень в 1,04 и 1,13 раза, а в 4-й группе был ниже его в 1,04 раза (Р>0,95). Эта тенденция продолжилась до конца опыта. Гемоглобин в крови птиц 2-й и 3-й групп всегда был выше, чем в контроле (Р>0,95), у птиц 4-й группы — ниже по сравнению с контролем.

Колебания эритроцитов и гемоглобина отразились на показателе гематокрита. Его значение к 7-м суткам во всех группах составляло от 34,2 до 42,6%. При этом у птиц 2-й и 3-й групп гематокрит был выше контрольного показателя в 1,04 и 1,1 раза, а в 4-й группе — ниже его в 1,12 раза (Р>0,95). В последующем данная направленность сохранялась.

Содержание лейкоцитов в крови перепелов опытных групп с 7-х суток эксперимента отличалось от данных контрольной группы и повышалось с увеличением возраста птиц. Но лейкоциты во 2-й и 3-й группах были достоверно выше контрольного значения. В 4-й группе уровень лейкоцитов, наоборот, постоянно снижался.

Количество тромбоцитов в крови перепелов через 7 суток от начала выпаивания ЭПП заметно колебалось — от 95,2 до 115,7 10⁹/л. Максимальный их уровень во все сроки опыта замечен в крови птиц 3-й группы.

Разные дозы ЭПП неодинаково влияли на показатели лейкограммы. Низкие дозы способствовали умеренной активизации клеток, участвующих в иммунных реакциях, средние — значительно активизировали их, высокие — затормаживали активность пролиферации иммунокомпетентных клеток.

Значительную активизацию лимфоцитарных клеток регистрировали под влиянием средних доз ЭПП. К 7-м суткам содержание лимфоцитов в крови перепелов 3-й группы превысило показатели в 1, 2 и 4-й группах на 7,1; 4,3 и 12,0% соответственно. В последующие сроки количество лимфоцитов увеличивалось как в возрастном аспекте, так и от действия ЭПП. На 14-е сутки уровень лимфоцитов в 3-й группе превышал показатели в 1, 2 и 4-й группах на 14,3; 8,1 и 16,6% соответственно, на 30-е сутки — на 17,7; 5,3 и 28,7%; на 45-е сутки — на 16,5; 1,9 и 29,2%; на 60-е сутки — на 17,3; 3,0 и 20,0%; на 210-е сутки — на 16,6; 3,8 и 20,3% соответственно (Р>0,95).

Средние дозы ЭПП способствовали значительной активизации в организме перепелов псевдоэозинофилов. На 7-е сутки их содержание в крови птиц 3-й группы было выше, чем в 1, 2 и 4-й группах на 2,4; 0,9 и 4,4% соответственно; на 14-е сутки — на 3,8; 2,2 и 13,7%; на 30-е сутки — на 3,5; 1,8 и 8,6%; на 45-е сутки — на 1,8; 1,8 и 15,5%; на 60-е сутки — на 14,7; 2,6 и 13,3%; на 210-е сутки — на 14,6; 1,1 и 16,6% соответственно (Р>0,95).

Содержание базофилов в крови перепелов контрольной группы во все сроки не превышало 0,1-1,5%. К 7-м суткам уровень базофилов у перепелов в 1-й и 2-й группах не изменился, в 3-й группе составил 0,2%, в 4-й группе базофилов не выявлено. В дальнейшем количество базофилов в 1-й и 4-й группах было одинаковым — 0,1-0,15%. Во 2-й и особенно в 3-й группе этот показатель возрос в 3-4 раза (0,3-4%).

Уровень эозинофилов также зависел от доз ЭПП. Самое высокое содержание эозинофилов регистрировалось в 3-й группе. Через 7 суток количество эозинофилов в данной группе превысило показатели 1, 2 и 4-й групп на 0,8; 0,5 и 1,2% соответственно; через 14 суток — на 1,0; 0,1 и 1,6%; через 30 суток — на 1,8; 0,8; 2,2%; через 45 суток — на 1,6; 0,2 и 1,9%; через 60 суток — на 1,5; 0,2 и 1,9% соответственно (Р>0,95).

Динамика моноцитов в крови перепелов контрольной и опытных групп изменялась подобно динамике лимфоцитов. К концу опыта уровень моноцитов во 2-й и 3-й группах был одинаковым, превысив контрольный показатель лишь в 1,04 раза. В 4-й группе к этому сроку моноцитов было 1,26 раза меньше по сравнению со 2-й и 3-й группами.

К 14-м суткам в миелограмме перепелов контрольной и опытных групп регистрировались выраженные изменения показателей клеток зернистого ростка лейкоцитов. Максимальное содержание этих клеток отмечалось в препаратах из костного мозга птиц 3-й группы (34%) и превысило их уровень в 1, 2 и 4-й группах на 10,1; 6,8 и 16,1% соответственно (Р>0,95). Данную закономерность отмечали до 60-х суток. До конца опыта красный костный мозг перепелов 2-й и 3-й групп в разной степени активности вырабатывал клетки зернистого ростка лейкоцитов. К этому периоду их уровень в мазках из костного мозга перепелов 3-й группы был выше значений у птиц 1, 2 и 4-й групп в 1,87; 1,06 и 2,0 раза соответственно.

В красном костном мозге изменялась и динамика лимфоидных клеток. К 14-м суткам регистрировалось выраженное увеличение количества лимфоцитов в красном мозге птиц 3-й группы (10,6%). Показатели по 1, 2 и 4-й группам были превышены в 1,32; 1,15 и 1,74 раза соответственно. В последующие сроки наблюдалось дальнейшее повышение активности пролиферации лимфоидных клеток во 2-й и 3-й группах и снижение активности их выработки в 4-й группе.

Такое яркое влияние разных доз ЭПП на гемо-эритро-лейкопоэз и кроветворение в организме перепелов отразилось и на мясной продуктивности птиц. До 14-суточного возраста (до внесения в рацион ЭПП) в живой массе перепелов контрольной и опытных групп не наблюдалось колебаний. На 7-е сутки масса самцов составляла 34,2-35,3 г, самок — 32,1-3,6 г; на 14-е сутки — 56,9-57,4 и 55,6-56,8 г соответственно. Через неделю после применения ЭПП регистрировались значительные отличия в живой массе не только по половому признаку птиц, но и по группам.

Живая масса 21-суточных самок оказалась больше, чем у самцов, на 10,5 г и составила 116,8 г. Этот показатель в 2-й и 3-й группах был выше, чем в 1-й группе: по самцам — на 13,4 и 22,4 г соответственно, по самкам — на 10,0 и 16,4 г соответственно. Живая масса самцов и самок 4-й группы уступала контрольной на 7,1 и 6,8 г соответственно. Более высокая интенсивность прироста живой массы отмечалась у 30 и 45-су-точных птиц. К 90-м суткам живая масса самок 1-й группы была выше, чем у самцов, на 24,3 г, составив 242,7 г. У самцов 2, 3 и 4-й групп данный показатель превысил контрольный на 27,6; 31,8 и 18,9 г соответственно; у самок — на 17,6; 27,7 и 9,9 г соответственно.

Итак, низкие дозы ЭПП оказывают на организм перепелов умеренное стимулирующее действие. Средние дозы ЭПП вызывают выраженную активизацию и повышение в крови птиц эритроцитов и гемоглобина до высшей границы физиологических норм, а также гематокрита, способствуют увеличению лейкоцитов, тромбоцитов, лимфоцитов, моноцитов, базофилов, эозинофилов и псевдоэозинофилов.

Позитивные гематологические реакции в организме перепелов являются ответной реакцией красного костного мозга на действие ЭПП. В миелограмме птиц под влиянием ЭПП возрастает продукция клеток зернистого ростка лейкоцитов, лимфоидных клеток и клеток эритроидного ростка. Следовательно, для повышения мясной продуктивности перепелов оптимальны средние дозы ЭПП. Высокие дозы ЭПП оказывают на организм перепелов некоторое супрессивное влияние.

Таким образом, ЭПП — препарат с выраженной биологической активностью, улучшающий обменные процессы, кроветворение, иммунный статус в организме перепелов и повышающий их продуктивные качества.

Р.Т.МАННАПОВА, Г.Д.АФАНАСЬЕВ, ИССЕ МОХАМЕД ЯССИН, А.С.КОМАРЧЕВ РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева ж-л «Пчеловодство» №4, 2018 г.

Литература

1. Берикашвили З.Н., Боер И.В. Антибактериальная активность экстрактов пчелиного подмора // Вестник Краснодарского государственного аграрного университета. — 2009. — № 3. 2. Дунаева Е.А., Арешидзе Д.А. О результатах испытания на безвредность экстракта из подмора пчел // Вестник МГОУ. — 2009. — № 1. 3. Кашина Г.В., Шепелев В.Г., Фефелова И.А. Биологически активные вещества из подмора пчел // Пчеловодство. — 2014. — № 8. 4. Маннапова Р.Т., Рапиев Р.А. Восстановление кроветворения необработанным янтарем на фоне гипотериоза // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э.Баумана. — 2013. — Т. 213. 5. Маннапова Р.Т., Панин А.Н. Биологически активные продукты пчеловодства и иммунитет // сб. Методы повышения продуктивных и защитных функций организма животных в Республике Башкортостан. — БГАУ, 2000. 6. Селионова М.И., Погарская Н.В. Использование хитозан-меланинового комплекса и препарата на его основе при выращивании козлят // сб. науч. трудов ГНУ СНИИЖК. — 2010. — № 1. 7. Шрамм Н.И., Бабиян Л.К., Трухина В.И., Белоногова В.Д., Гилева А.А. Разработка и исследование спиртовых извлечений из пчелиного подмора и личинок восковой моли // Фундаментальные исследования. — 2014. —№ 6—5.